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日期:2016-09-08瀏覽:1855次
ELISA實驗常見問題分析
異常 | 結果描述 | 原因分析 | 對策 |
白板 | 顯色步驟結束后,酶標板所有孔均無顏色。陽性對照不顯色。 | 試劑已過效期,或不同試劑盒組分混用 | 檢查試劑的組分及批號,確認未過期以及所有組分均屬對應的試劑盒。不同試劑盒或不同批號的試劑不能混用。 |
錯加、漏加試劑底物、顯色劑A或B | 嚴格按說明書的步驟操作,加完試劑后可觀察一下液面高度是否一致,以減少漏加現象。 | ||
洗板及加樣過程中,酶標受污染失活失去催化顯色劑顯色的能力 | 確認盛酶標的容器不含酶抑制劑如疊氮鈉等,確認配制洗液的容器已洗干凈。 | ||
終止液誤作洗滌液稀釋或當底物緩沖液配制 | 每次配制時都應看清標簽標明物質 | ||
蒸餾水有問題 | 確認配制洗液的純化水達到要求且未污染,與好蒸餾水比較。 | ||
顯色弱、靈敏度低 | 實驗結束后,包括陽性對照、質控在內的所有板孔顏色均較淡。 | 試劑盒超過期, 超過有效期的產品可能會產生很弱的信號; 試劑盒沒有按規定進行保存,受高溫影響; | 實驗前檢查試劑的組分及批號,確認試劑未過期。 不要將試劑盒長時間置于常溫下,按使用規定儲藏。 |
試劑、樣品用前未平衡至室溫 | 從低溫冰箱中取出的試劑及樣品應置室溫平衡 20分鐘左右。 | ||
加入試劑的體積和時間有誤,移液器計量不準,吸嘴內水分太多或不清潔; | 確定所使用的試劑體積正確,加入時間適當。 校正移液器,移液器與吸嘴配合要緊密吻合。移液不宜太快,排放應*。 | ||
洗板及加樣過程中,酶標受污染失活而失去催化顯色劑顯色的能力 | 確認盛酶標的容器不含酶抑制劑如疊氮鈉等,確認配制洗液的容器已洗干凈,確認配制洗液的純化水達到要求且未受污染。 | ||
孵育時間及孵育溫度未達到要求 ,反應板放入培養箱時注意溫度并及時調整。 | 孵育溫度應控制在 37-38℃,孵育時間嚴格按照說明書操作。 保溫期內不宜多開門,以免影響保溫。 | ||
洗板次數過多,或濃縮洗液稀釋倍數不符合要求;洗滌沖擊力太大。浸泡時間太長; | 嚴格按說明書要求稀釋濃縮洗液及洗板,減小洗滌沖擊力,按說明書要求置留洗滌液時間和洗滌次數。 | ||
顯色劑加量不足或順序顛倒,或混合后加入; | 顯色劑滴瓶垂直向下,持力均勻,滴速不宜過快,先加顯色劑 A,后加顯色劑B,不可將A、B液混合后加入 | ||
底物作用時間不夠; | 準確定時。 | ||
蒸餾水水質有問題; | 測定蒸餾水配制試劑對酶免疫法的影響。 | ||
實驗結束后,陰陽性對照正常,質控正常,但臨床標本感覺顯色較弱 | 待測標本中可能不含強陽性標本,故結果可能是正常的 | 如有懷疑,可復檢 | |
標本加入疊氮鈉作為防腐劑 | 酶免實驗中的標本禁用疊氮鈉作為防腐劑,可選用 proclin、硫柳汞等其他防腐劑 | ||
陰陽性對照正常,但質控、參考品或個別弱陽性標本未能檢出。 | 未達要求的孵育溫度及孵育時間可檢出強陽性標本,但 質控或弱陽性標本受 溫度變化影響較大而被未檢出 | 質控品或標本避免反復凍融。標本在一周內使用的,可存于 2-8℃,如需長期保存,應置于-20℃以下保存。質控品應小量分裝,并置于-20℃以下保存。 | |
質控品或標本高溫放置過久,或被反復凍融致待測物滴度下降,而未能檢出 | 重新設定酶標儀的參數,特別是檢查濾光片是否匹配。 | ||
儀器設定不正確,濾光片不匹配 | 重新設定酶標儀的參數,特別是檢查濾光片是否匹配 | ||
靈敏度過高、板底高、高背景 | 終止后,整板結果顯現均一的黃色或淡黃色;或陰陽性對照、質控正常,標本陰性標本 OD值過高。 | 整板的黃板現象可能是由于錯加其他試劑造成,如同時操作兩對半試劑時,測 HbsAb板用于測HBsAg等; | 實驗前檢查試劑的組分及批號,確認所有組分均屬于對應的試劑盒。不同試劑盒或不同批號的試劑不能混用 |
酶標對吸頭的污染以及對盛放顯色劑容器的污染都易造成黃板現象; | 避免試劑組分間的交叉污染,確保吸頭、容器的干凈 | ||
顯色劑在光照條件下放置過久,實驗前已變藍 | 顯色劑 A、B未使用前避光保存 | ||
孵育溫度過高或孵育時間過長; | 孵育溫度應控制在 37-38℃,孵育時間嚴格按照說明書操作。 | ||
未按要求洗板。特別是洗滌時每孔未注滿洗液,易造成花板黃板現象 | 嚴格按說明書要求洗板 | ||
花板,一般是由于臨床標本的收集、處理和保存方法不當造成 | 放置時間(自然放置 1~2h)及離心轉速(3000r/min)、離心時間(15min)應引起注意。 | ||
出現隨機性的花板、跳孔現象 | 樣品離心不*,反應孔內發生凝血或殘留細胞成分; | 充分離心, 3000rpm6分鐘以上。 | |
加樣時交叉污染; | 加標本時盡量 避免交叉污染。如盛標本的試管周圍常有血痂,易脫落,應遠離酶標板。 | ||
手工洗板造成的交叉污染 | 手工洗板時前 3次注洗液后應立即棄去,后幾次再設定浸泡時間,可減少交叉污染 | ||
洗板機加液頭堵塞導致加液不滿或吸液殘留量較大,造成 花板、跳孔 | 疏通加液頭,使洗板時每孔均注滿洗液,吸液時殘留量要小。 | ||
拍板時交叉污染 | 洗板完畢拍板時用合適的吸水紙巾,不要把無關物質拍進板孔,并盡量不要在同位置拍,以免交叉污染。 | ||
假陽性 | 假陽性現象是一個綜合現象,可參考上文“靈敏度過高、板底高、高背景”中的分析。這里只列舉常見的原因及對策。 | 計算 Cutoff值時使用的公式不正確,導致計算得出的CutOff值過低,從而導致出現假陽性 | CutOff值計算公式應嚴格參照所屬產品的說明書,應注意各個酶免產品的Cutoff值計算公式不盡相同 |
洗板時未能注滿洗液或洗板次數、浸泡時間不夠, 洗滌不充分,樣品中有其他成分殘留 導致花板、跳孔,假陽性增多 | 嚴格按說明書要求洗板。調整洗板機時,應注意有時儀器標示的液量與實際液量并不相符,應根據實際情況調整至每孔注滿。 | ||
血清標本處理不當,如未除去細胞成分、纖維蛋白原及其它干擾物可出現孔底由變藍的跳孔現象,此標本重復實驗結果往往是陰性; | 放置時間(自然放置 1~2h)及離心轉速(3000r/min)、離心時間(15min)應引起注意 | ||
廠家試劑質量的變化造成 | 國家標準要求提高靈敏度時,廠家試劑靈敏度也相應提高,假陽率常常有所上升,但只要在合理范圍,是可以接受的 | ||
水質問題 | 防止蒸餾水污染 | ||
加酶量過多(如 50uL誤認為100uL)或丙肝酶稀釋時加量過多 | 加酶前檢查移液器調節量是否準確,稀釋酶時思想要集中 | ||
培養箱溫度超過 37℃</ |
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